Easy Editing Cas9 Pro Kit是基于本公司的自递送基因编辑试剂盒,在Cas9酶和自递送转染试剂的基础上,组合了靶向T细胞受体α亚基TRAC基因的sgRNA,并且组合了AAV病毒作为供体,可以在TRAC基因切割位点插入靶向CD19的CAR基因。
其中sgRNA的序列为:AGAGTCTCTCAGCTGGTACA。本试剂盒中采用的sgRNA序列经过特殊修饰,能显著提高细胞内稳定性,提高编辑效率。
AAV病毒包含的Donor序列及插入位点信息如下:
本试剂盒操作简便,不需要昂贵的电转系统,CAR的插入效率可高达70%以上且无细胞毒性。是用于T细胞基因编辑、建立CAR-T细胞制备体系的理想的标准试剂盒。
运输和储存条件:本品需干冰运输。到货后放置在-20℃冰箱3个月内用完,长期不使用须保存于-80℃冰箱。
3.1 培养T细胞,建议先激活48小时,之后取1E6的细胞数,300g 离心5分钟,加新鲜培养基,接种到6孔板的1个孔,培养过夜。
3.2 实验当天,将试剂盒从冰箱中取出,放置在室温;
3.3 配制转染复合物:将1.5uL Solution III (sgRNA 100uM)和1.5uL Solution I(Cas9酶)在1.5ml EP管中混合后放置在37℃培养箱孵育5-10分钟,形成RNP;随后加入2uL AAV病毒,加入50uL Solution II(自递送转染试剂)(使用前吹打混匀),与RNP充分吹打混匀后,在室温下继续孵育5分钟,形成转导复合物;
3.4 孵育等待期间,将T细胞吹打混匀,全部转移到离心管中,300g离心5分钟,弃除干净培养基上清;
3.5 用PBS重悬细胞,再次300g离心5分钟;
3.6 弃干净上清,用3.3制备的转导复合物重悬细胞沉淀,轻轻混匀后,转移至37℃培养箱孵育45分钟;
3.7 向孵育后的细胞混合液中加入600uL含10% FBS和200U IL2 的T细胞培养基,将细胞重悬后铺到24孔板中进行培养,保持细胞密度在2-3E6/ml;
3.8 培养4-5天后,对细胞进行编辑效率检测;
图:采用本试剂盒,培养到第7天时CAR-T阳性率达到71.9%。
(1) Ran, F., Hsu, P., Wright, J. et al. Genome engineering using the CRISPR-Cas9 system. Nat Protoc 8, 2281–2308 (2013).
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