Easy Editing Cas12a Kit是一款自递送 CRISPR/Cas12a基因编辑工具,操作简便,不需要昂贵的电转系统,编辑效率高达 85-90%且无细胞毒性。是除Cas9酶之外用于KO/KI基因编辑的理想试剂盒。本产品适用于各种原代细胞和细胞系的基因编辑。
运输和储存条件:本品需干冰运输。到货后放置在-20℃冰箱3个月内用完,长期不使用须保存于-80℃冰箱。
3.1 实验前1-2天,将细胞以合适的密度接种,使细胞24-48小时后达到80%融合度(以T细胞为例,建议激活48小时后,取1E6的细胞数,300g 离心5分钟后,加培养基铺到新板,第二天编辑)。
3.2 实验当天,将试剂盒从冰箱中取出,放置在室温;
3.3 配制转染复合物:将1.5uL crRNA(100uM)和1.5uL Solution I在1.5ml EP管中混合后放置在37℃培养箱孵育5-10分钟,形成RNP;随后加入50uL Solution II(使用前吹打混匀),与RNP充分混匀后,在室温下继续孵育5分钟,形成转导复合物;
3.4 孵育等待期间,如果处理贴壁细胞,将细胞消化并中和胰酶后吹打成单细胞,如果处理悬浮细胞,直接吹打混匀;
3.5 细胞计数,取1E6细胞数量对应的细胞悬液,将细胞离心后,务必彻底弃除干净培养基;
3.6 用PBS重悬细胞,再次300g离心5分钟;
3.7 弃干净上清,用3.3制备的转导复合物重悬细胞沉淀,轻轻混匀后,转移至37℃培养箱孵育45分钟;
3.8 向孵育后的细胞混合液中加入适量培养基后转入孔中继续培养,例如加入2mL培养基后转移入6孔板的一个孔进行培养(对于1E6的T细胞,加入600uL含10% FBS和200U IL2 的T细胞培养基,将细胞重悬后铺到24孔板中进行培养,保持细胞密度在2-3E6/ml);
3.9 培养4-5天后,对细胞进行编辑效率检测;
注意:
v 如果要在切割位点进行基因敲入,需配合AAV (MOI: 2E4-5E4)病毒,若加入AAV体积小于5ul,将AAV加到3.3制备的转导复合物中。如果AAV滴度低,加入体积过大,将 AAV 加入到3.8的培养基中。
v 如需多基因编辑,在步骤3.3进行多RNP分别的制备。
v 编辑前细胞状态对编辑效率有显著影响,应使培养细胞处在良好状态。
图:采用本试剂盒,配合AAV病毒Donor,培养到第7天时CAR-T阳性率达到91.3%。
(1) Ran, F., Hsu, P., Wright, J. et al. Genome engineering using the CRISPR-Cas9 system. Nat Protoc 8, 2281–2308 (2013).
(2) Qi LS, Larson MH, Gilbert LA, Doudna JA, Weissman JS, Arkin AP, Lim WA. Repurposing CRISPR as an RNA-guided platform for sequence-specific control of gene expression. Cell. 2013 Feb 28;152(5):1173-83.
(3) Ren J, Liu X, Fang C, Jiang S, June CH, Zhao Y. Multiplex Genome Editing to Generate Universal CAR T Cells Resistant to PD1 Inhibition. Clin Cancer Res. 2017 May 1;23(9):2255-2266. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-16-1300. Epub 2016 Nov 4. PMID: 27815355; PMCID: PMC5413401.