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Auto-delivery Transfection Reagent

1. 产品简介:

Auto-delivery Transfection Reagent自递送转染试剂是一款创新性蛋白底物转染试剂,可用于Cas9Cas12aRNP底物向细胞内递送。在各种细胞中效率高达90%以上且无细胞毒性。本品可搭配各个品牌的Cas9Cas12a蛋白形成的RNP复合物,是用于KO/KI基因编辑的理想试剂。

2. 产品组份和运输储存条件

运输和储存条件:本品需干冰运输。到货后放置在-20℃冰箱3个月内用完,长期不使用须保存于-80℃冰箱。

3. 用于转染Cas9 RNP进行基因编辑时的使用方法

3.1 实验前1-2天,将细胞以合适的密度接种,使细胞24-48小时后达到80%融合度(以T细胞为例,建议激活48小时后,取1E6的细胞数,300g 离心5分钟后,加培养基铺到新板,第二天编辑)。

3.2 实验当天,将试剂盒从冰箱中取出,放置在室温;

3.3 配制转染复合物:将1.5uL sgRNA100uM)和1.5uL Cas91.5ml EP混合后放37培养箱孵育5-10分钟,形成RNP随后加入50uL 自递送转染试剂(使用前吹打混匀),与RNP充分混匀后,在室温下继续孵育5分钟,形成转导复合物

3.4 孵育等待期间,如果处理贴壁细胞,将细胞消化并中和胰酶后吹打成单细胞,如果处理悬浮细胞,直接吹打混匀;

3.5 细胞计数,取1E6细胞数量对应的细胞悬液,将细胞离心后,务必彻底弃除干净培养基

3.6 PBS重悬细胞,再次300g离心5分钟;

3.7 弃干净上清,用3.3制备的转导复合物重悬细胞沉淀,轻轻混匀后,转移至37培养箱孵育45分钟

3.8 向孵育后的细胞混合液中加入适量培养基后转入孔中继续培养,例如加入2mL培养基后转移入6孔板的一个孔进行培养对于1E6T细胞,加入600uL10% FBS200U IL2 T细胞培养基,将细胞重悬后铺到24孔板中进行培养,保持细胞密度在2-3E6/ml

3.9 培养4-5天后,对细胞进行编辑效率检测

注意:

如果要切割位点进行基因敲入,需配合AAV (MOI: 2E4-5E4)病毒,若加入AAV体积小于5ul,将AAV加到3.3制备的转导复合物中。AAV滴度低,加入体积过大,将 AAV 加入到3.8的培养基中

如需多基因编辑,在步骤3.3进行多 RNP 的制备。

编辑前细胞状态对编辑效率有显著影响应使培养细胞处在良好状态。

4. 应用案例:对人体原代T细胞,敲除内源性TRAC,并敲入人工CAR序列,构建CAR-T细胞

图:采用本试剂盒,配合AAV病毒转导,一次基因编辑,CAR-T阳性率达到71.9%

5. 其他相关产品

 

 

6. 引用文献

(1) Ran, F., Hsu, P., Wright, J. et al. Genome engineering using the CRISPR-Cas9 system. Nat Protoc 8, 2281–2308 (2013).

(2) Qi LS, Larson MH, Gilbert LA, Doudna JA, Weissman JS, Arkin AP, Lim WA. Repurposing CRISPR as an RNA-guided platform for sequence-specific control of gene expression. Cell. 2013 Feb 28;152(5):1173-83.

(3) Ren J, Liu X, Fang C, Jiang S, June CH, Zhao Y. Multiplex Genome Editing to Generate Universal CAR T Cells Resistant to PD1 Inhibition. Clin Cancer Res. 2017 May 1;23(9):2255-2266. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-16-1300. Epub 2016 Nov 4. PMID: 27815355; PMCID: PMC5413401.

 

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